生化試劑空白吸光度是反映試劑質(zhì)量的指標之一，但不能反映試劑質(zhì)量的全部。試劑成份、純度、用量及穩(wěn)定性，才是保證試劑質(zhì)量的關(guān)鍵所在。目前市售的一些試劑具有抗干擾作用，主要是通過加入抗干擾物質(zhì)或使用新的色素原以避免內(nèi)源性物質(zhì)的干擾。但值得注意的是：一些試驗項目在消除內(nèi)源性物質(zhì)干擾的同時，會帶來樣品含量真實性的變化。

　　一、試劑空白

　　生化試劑空白吸光度是反映試劑質(zhì)量的指標之一。每種試劑都有一定的空白吸光度范圍，試劑空白吸光度的改變往往提示該試劑的變質(zhì);如利用Trinder反應為原理的檢測試劑會因含酚類物質(zhì)被氧化為醌而變?yōu)榧t色。堿性磷酸酶、r一谷氨酰轉(zhuǎn)肽酶、淀粉酶等檢測試劑會因基質(zhì)分解出硝基酚或酚基苯胺而變黃。有些試劑久置后變渾濁。這些情況均可使空白吸光度升高。丙氨酸氨基轉(zhuǎn)移酶、天冬氨酸氨基轉(zhuǎn)移酶等負反應，在放置過程中其試劑空白吸光度會因NADH自行氧化為NAD+而下降。

　　原則上，吸光度上升的反應，其試劑空白吸光度越低越好，不能超過一個高限;相反，吸光度下降的反應，其試劑空白吸光度不能低于一個低限。因此，生化試劑空白吸光度限值，常作為程序參數(shù)輸入儀器，如經(jīng)核查超限，儀器會自動報警，提示更換試劑。需要指出的是，還原型輔酶I(或II)等投料量不足或劣質(zhì)的原料，往往需要加大用量，才使“表觀”吸光度上升，湊合過試劑空白核對的“關(guān)”，其后果為如下情況：

　　a.線性范圍變窄。現(xiàn)象：高值測不高。原因：生產(chǎn)試劑時有效成分投料量不足;試劑成份穩(wěn)定性較差。

　　b.靈敏度變低現(xiàn)象：酶促反應速度曲線斜率下降，測定結(jié)果有嚴重系統(tǒng)誤差。原因：試劑底物濃度不足。

　　c.低值偏高現(xiàn)象：生化試劑空白的變化曲線(吸光度VS時間)明顯波動。原因：試劑自身不穩(wěn)定，自行分解;工具酶純度不夠，雜酶含量超限，導致干擾作用。

　　二、樣品信息

　　樣品的溶血、脂血、黃疸等會對測定結(jié)果產(chǎn)生非化學反應的干擾。因此，應根據(jù)溶血、脂濁、黃疸的光譜吸收特性，采用雙波長或多波長的檢測模式，并在結(jié)果計算中扣除因溶血、脂血、黃疸引起的影響，減少干擾程度。

　　三、測定范圍

　　每種待測物都有一個可測定的濃度或活性范圍，樣品結(jié)果若超過此范圍，分析儀將顯示結(jié)果超過范圍的提示。表示試劑已經(jīng)變質(zhì)，應更換合格生化試劑。

　　四、酶的預活化

　　測定血清中的某些酶，如CK，離體(采血)后很容易失活。失活的原因是酶活性中心的活性基因巰基(一SH)被氧化造成的。只有通過適當?shù)倪€原作用才能重新激活。

　　五、底物耗盡

　　使用連續(xù)監(jiān)測法、兩點法測定酶活性時，若酶活性非常高，底物接近被耗盡，吸光度上升或下降會超過某一吸光度變化范圍，監(jiān)測期的吸光度將偏離線性，使測定結(jié)果不可靠。

　　六、校準與結(jié)果溯源性

　　酶的校正：要滿足在同一方法學、同一測定條件、與理論計算的FACTOR值差異不大，沒有發(fā)現(xiàn)有明顯影響因素，方可進行校正。

　　檢驗結(jié)果溯源性，得建立一個可靠的參考系統(tǒng)作為準確性基礎，然后將準確性轉(zhuǎn)移到常規(guī)方法測定中去，使常規(guī)方法測定結(jié)果可溯源到參考系統(tǒng)所提供的準確性基礎上來。在實現(xiàn)溯源性目標過程中，永遠以患者新鮮標本為實驗對象，以方法學對比試驗方法為驗證手段。方法學對比試驗常采用回歸方程進行統(tǒng)計分析，假如斜率接近1，截距較小，這意味著實驗室常規(guī)方法對標本測定結(jié)果和溯源目標參考系統(tǒng)對標本檢測結(jié)果非常接近。

　　校準液標示值往往是按其基質(zhì)偏差修正的，所以標示值并非實際值。校準液、質(zhì)控血清通常是經(jīng)過處理的混合人或動物血清，這種制備物在特定分析系統(tǒng)中往往與人新鮮血清反應性不同而產(chǎn)生基質(zhì)偏差。如總膽固醇測定基質(zhì)效應研究指出：校準液酶法測定回收結(jié)果偏低可達5%~7%。

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